本产品适用于小鼠脾脏样本中自然杀伤(NK)细胞的分离。工作原理属于阴性分选,采用磁珠和单克隆抗体对非目标细胞(非NK 细胞)进行标记和去除,从而达到小鼠NK细胞分选的目的。该分选过程不直接标记NK细胞表面抗原,可最大程度减少对NK细胞活化状态及功能的影响。分选得到的NK细胞可应用于下游的分子生物学和细胞生物学实验。
产品特点:
高纯度:分选获得的小鼠NK细胞纯度可达91%。
高活性:可获得无抗体标记的功能良好的小鼠NK细胞。
操作简便:无需分离柱,搭配磁性分离器使用即可完成小鼠NK细胞的分离。
评测数据:
1. 分选后NK细胞纯度检测
使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞。分选前后的细胞用PE anti-mouse CD3抗体(克隆号:500A2)和FITC anti-mouse CD49b抗体(克隆号:DX5)染色后进行流式细胞分析。如图1所示,脾脏初始样本中NK细胞(CD3⁻CD49b⁺)占比约为4%,分选后的NK细胞纯度可达91.57%(91.53±1.78%)。
图1. 流式检测分选前后NK细胞纯度
2. 分选后细胞活率分析
(1)使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞。分选前后的细胞用7-AAD染色后,使用流式细胞仪检测细胞活率。如图2所示,在分选前脾脏细胞中活细胞比例为97.98%;分选后活细胞比例为91.90%。

图2. 流式检测分选前后细胞活率
(2)使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞,进一步对分选后的CD49b+ 细胞群体进行活率分析。分选前后的细胞用7-AAD染色后,通过流式细胞仪检测细胞活率。如图3所示,在CD49b⁺细胞门控中,分选前活细胞比例为82.54%;经阴性分选后,CD49b+ 细胞群体活率提升至95.38%。
图3. 流式检测分选前后CD49b+细胞活率
3. 分选后NK细胞功能分析
使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞。分选后的NK细胞加入Cell Stimulation Cocktail(含PMA、Ionomycin、Brefeldin A、Monensin)刺激4-6小时,随后通过流式细胞术检测细胞表面CD107a(LAMP-1)及胞内因子IFN-γ的表达水平。如图4所示,经Cell Stimulation Cocktail刺激后,NK细胞显著上调CD107a表达并分泌IFN-γ,细胞表现出增强的脱颗粒活性和细胞因子分泌能力。

图4. Cell Stimulation Cocktail刺激后NK细胞CD107a、IFN-γ表达上调
4. 竞品试剂盒性能对比
对比BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒和竞品NK细胞分选试剂盒得到的NK细胞纯度、活率及得率。
(1)从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞。分选前后的细胞用PE anti-mouse CD3抗体(克隆号:500A2)和FITC anti-mouse CD49b抗体(克隆号:DX5)染色后进行流式细胞分析。如图5所示,使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒分选得到的NK细胞纯度均高于两个竞品组(Competitor Ⅰ和Competitor Ⅱ) 。
图5. Beaver试剂盒和竞品试剂盒小鼠NK细胞阴性分选纯度比较
(2)分别使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒和竞品NK细胞分选试剂盒,从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞,比较细胞分选后的活率。如图6所示,BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒分选得到的NK细胞活率在脾脏细胞中均优于竞品对照组(Competitor Ⅰ和Competitor Ⅱ)。
图6. Beaver试剂盒和竞品试剂盒小鼠NK细胞阴性分选活率比较
(3)分别使用BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒和竞品NK细胞分选试剂盒,从C57BL/6小鼠的脾脏细胞中分选NK细胞,比较细胞分选后的得率。如图7所示,BeaverBeads®小鼠NK细胞阴性分选试剂盒的NK细胞得率(67.33±8.19%)均优于竞品对照组(Competitor Ⅰ和Competitor Ⅱ)。
图7. Beaver试剂盒和对照试剂盒小鼠NK细胞阴性分选得率比较